Dr. Sabina Tahirovic
Gruppenleiterin
Die Core Neuronale Zellkultur ist dem Lehrstuhl von Prof. Dr. Herms assoziiert
Deutsches Zentrum für Neurodegenerative Erkrankungen (DZNE)
Schillerstraße 44
80336 München
sabina.tahirovic@dzne.de
+49 (0) 89 / 2180-75410 (Büro)
+49 (0) 89 / 2180-75358 (Labor)
+49 (0) 89 / 2180-75415
Weitere Informationen
Forschungsschwerpunkte
- Immunfluoreszenz-Bild kultivierter zerebellärer Neuronen, Co-Färbung mit Rhodamin-Phalloidin (Magenta), um das Aktin-Zytoskelett zu visualisieren, und einen Antikörper gegen das Aktin regulierende Protein WAVE (grün).
Das Ziel der „Neuronalen Core Facility“ ist es, hochmoderne Technologien für die Kultivierung von Zellen aus Nervengewebe anzubieten. Funktionelle Analysen von kultivierten primären Neuronen sind ein entscheidendes Hilfsmittel, um die physiologische und pathologische Entwicklung im Zentralnervensystem (ZNS) zu verstehen.
Unsere Aufgabe ist es, Forschungsprojekte zu unterstützen, die zum Ziel haben, die molekularen Mechanismen neurodegenerativer Erkrankungen zu verstehen, insbesondere der Alzheimer Krankheit, der Parkinson-Erkrankung und der Frontotemporalen Lobären Degeneration (FTLD).
Wir bieten Unterstützung und Training in der Kultivierung verschiedener Nervenzelltypen, wie z. B. dissoziierter hippokampaler, kortikaler, zerebellärer Neurone oder Motoneurone, sowie primärer Astrozyten oder Mikroglia. Ein Vorteil der primären Zellkultur ist es, isolierte, homogene Populationen von Neuronen unter genau definierten Bedingungen kultivieren zu können. Wir bieten Unterstützung und Training in der Kultivierung verschiedener Nervenzelltypen, wie z. B. dissozierte hippokampale, kortikale, zerebelläre Neuronen oder Motoneuronen, sowie primärer Astrozyten oder Mikroglia an.
- Immunfluoreszenz-Bild eines kultivierten zerebellären Explantats, immungefärbt mit einem Antikörper gegen Tuj1 zur Visualisierung der migrierenden Neuronen.
Die „Neuronale Core Facility“ bietet auch Expertise in der Video-Mikroskopie von kultivierten Neuronen. Diese Technik dient dazu, die neuronale Dynamik und den axonalen Transport zu untersuchen. Sind diese Prozesse gestört, kann dies zur Neurodegeneration führen. Zusätzlich bieten wir Know-how in der Kultivierung von Explantaten und organtypischen Schnitten. Diese Kulturen imitieren komplexe in vivo Bedingungen, in denen die verschiedenen Neurone in ihrem physiologischen Netzwerk verbleiben.
- Immunfluoreszenz Bild von kultivierten hippokampalen Neuronen, Co-Färbung mit Rhodamin-Phalloidin (rot), um das Aktin-Zytoskelett zu visualisieren, und einem Antikörper gegen den neuronalen Marker Tuj1 (grün).
Außerdem arbeiten wir an der Verbesserung der vorhandenen Werkzeuge und Techniken, um primäre Neurone zu transfizieren. Dies ist derzeit ein limitierender Schritt in der Expressionsregulation von krankheitsrelevanten Genen. Mit dieser Technik wollen wir funktionelle Analysen, die nur mit primären Zellsystemen möglich sind, mit phänotypischen Analysen in Tiermodellen verknüpfen. Beide Systeme sind sehr wertvoll für die Untersuchung der physiologischen Funktionen von Genen, die an neurodegenerativen Erkrankungen beteiligt sind. Die daraus gewonnenen Ergebnisse werden für die Entwicklung neuer Medikamente hilfreich sein.
Publikationen
Buch
Neuronal polarity.
Tahirovic, S and Bradke F, 2009, Cold Spring Harb Perspect Biol. 1(3), Review.
Peer-Review Artikel
Electrical activity suppresses axon growth through Ca(v)1.2 channels in adult primary sensory neurons.
Enes J, Langwieser N, Ruschel J, Carballosa-Gonzalez MM, Klug A, Traut MH, Ylera B, Tahirovic S, Hofmann F, Stein V, Moosmang S, Hentall ID, Bradke F, 2010, Curr Biol. 20 (13), 1154-64
Rac1 regulates neuronal polarization through the WAVE complex.
Tahirovic S, Hellal F, Neukirchen D, Hindges R, Garvalov BK, Flynn KC, Stradal TE, Chrostek-Grashoff A, Brakebusch C, Bradke F, 2010, J Neurosci. 30 (20), 6930-43
Chronically CNS-Injured Adult Sensory Neurons Gain Regenerative Competence upon a Lesion of their Peripheral Axon.
Ylera B, Ertürk A, Hellal F, Nadrigny F, Hurtado A, Tahirovic S, Oudega M, Kirchhoff F, Bradke F, 2009, Curr. Biol. 19 (11), 930-6
Inactivation of the phosphoinositide phosphatases Sac1 and Inp54 leads to accumulation of phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate on vacuole membranes and vacuolar fusion defects.
Wiradjaja F, Ooms LM, Tahirovic S, Kuhne E, Devenish RJ, Munn AL, Piper RC, Mayinger P, Mitchell CA. 2007, JBC, 282 (22), 16295-307
Phosphoinositide synthesis and degradation in isolated rat liver peroxisomes.
Jeynov B, Lay D, Schmidt F, Tahirovic S, Just WW, 2006, FEBS Lett. 580 (25), 5917-5924
Cell growth-dependent coordination of lipid signaling and glycosylation is mediated by interactions between Sac1p and Dpm1p.
Faulhammer, F., Konrad G., Brankatschk B., Tahirovic S., Knödler A and Mayinger P, 2005, JCB. 168, 185-191
Regulation of intracellular phosphatidylinositol-4-phosphate by the Sac1 lipid phosphatase.
Tahirovic, S., Schorr M. and Mayinger, P, 2005, Traffic 6, 116-130
Role for lipid signaling and the cell integrity MAP kinase cascade in yeast septum biogenesis.
Tahirovic, S., Schorr M., Then A., Berger J., Schwarz H. and Mayinger, P, 2003, Curr. Genet. 43, 71-78
The phosphoinositide phosphatase Sac1 regulates secretion at the Golgi.
Schorr, M., Then, A. R., Tahirovic, S., Hug, N. and Mayinger, P, 2001, Curr. Biol. 11, 1421-1426